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糖原含量試劑盒簡單介紹

更新時間:2018-01-10      瀏覽次數:1509

糖原含量試劑盒簡單介紹

 

測定意義:

糖原是由葡萄糖單位構成的高分子多糖,是糖的主要的儲存形式之一,主要貯存在肝和肌肉
中作為備用能量,分別稱為肝糖原和肌糖原。肝糖原可調節血糖濃度,當血糖升高時可在肝
臟合成糖原,血糖降低時,肝糖原則分解為葡萄糖以補充血糖。因此,肝糖原對維持血糖的
相對平衡十分重要。肌糖原是肌肉中糖的儲存形式,在劇烈運動消耗大量血糖時,肌糖原不
能直接分解成血糖,必須先分解產生乳酸,隨血液循環到肝臟,通過糖異生轉變為肝糖原或葡
萄糖。

測定原理:

蒽酮法。利用強堿性提取液提取糖原,在強酸性條件下利用蒽酮顯色劑測定糖原含量。

需自備的儀器和用品:

可見分光光度計、水浴鍋、可調式移液器、1mL 玻璃比色皿、濃硫酸(不允許快遞)和蒸
餾水。

試劑的組成和配制:

提取液:液體 50mL×1 瓶,4℃保存;
試劑一:0.1mg/mL 的葡萄糖標準液 10mL×1 瓶,4℃保存;
試劑二:粉劑×1 瓶, 4℃保存;

 

糖原提取:

1﹑細胞或細菌:收集 500~1000 萬細菌或細胞到離心管內,離心后棄上清;加入 0.75mL 提
取液超聲波破碎細菌或細胞(功率 20%或 200W,超聲 3s,間隔 10s,重復 30 次);轉移至
10mL 試管中,95℃水浴 20min(蓋緊,防止水分散失),隔 5min 振搖試管 1 次,使充分混
勻;取出試管冷卻后,用蒸餾水定容到 5ml,混勻,8000g 25℃離心 10min,取上清液待測。
2﹑組織:稱取 0.1~0.2g 樣品,加入 0.75ml 提取液充分勻漿;轉移至 10ml 試管中;95℃水
浴 20min(蓋緊,防止水分散失),隔 5min 振搖試管 1 次,使充分混勻;待組織全部溶解后,
取出試管冷卻后,用蒸餾水定容到 5ml,混勻,8000g 25℃離心 10min,取上清液待測。

糖原含量試劑盒簡單介紹

步驟和加樣表:

1、分光光度計預熱 30min 以上,調節波長至 620nm,蒸餾水調零。
2、調節水浴鍋至 95℃。
3、試劑二工作液的配制:在試劑二中倒入 10mL 蒸餾水,緩慢倒入 40mL 濃硫酸,充分溶
解混勻后使用;用不完的試劑 4℃保存一周

糖原含量的計算:

1、按照樣本質量計算
糖原(mg/g 鮮重)=1.11×(C 標準×V1)×(A3-A1)÷(A2-A1)÷(W×V1÷V2)= 0.555×(A3-A1)÷
(A2-A1)÷W
2、按照蛋白質含量計算
糖原(mg/mg prot)=1.11×(C 標準×V1)×(A3-A1) ÷(A2-A1) ÷(V1×Cpr)=0.111×(A3-A1) ÷
(A2-A1) ÷Cpr 
1.11:是此法測得葡萄糖含量換算為糖原含量的常數,即 111ug 糖原用蒽酮試劑顯色相當于
100ug 葡萄糖用蒽酮所試劑顯示的顏色;C 標準管:標準管濃度,0.1mg/mL;V1:加入反
應體系中糖原提取液體積,0.25mL;V2:加入提取液體積,5mL; Cpr:樣本蛋白質濃度,
mg/mL;W:樣本鮮重,g。
注意:zui低檢測限為 10ng/g 鮮重或 0.1ng/ mg prot。

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